LSAB-Methode
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FÄRBEANWEISUNG FÜR DIE 
Labeled-Streptavidin-Biotin-Methode
(LSAB) 

mit dem automatischen Immunstainer TechMate von
DAKO
Stand: 21.01.99

  BR  = Brutschrank
  RT  = Raumtemperatur
  AK  = Antikörper
  WB = Wasserbad

  1.  Paraffinschnitte nach dem Schneiden noch mindestens eine Stunde auf
       der Wärmeplatte liegen lassen.

  2.  Schnitte über Nacht in den Brutschrank stellen bei 37°C.

  3.  Schnitte in vorgewärmtem (37°C) Xylol entparaffinieren ------------------> 30 min.
       
! In dieser Zeit AK-Verdünnungen ansetzen (BR)

  4.  absteigende Alkoholreihe -----------------------------------------------------------> aqua dest

  5. Kochen in vorgewärmten (95°C) TRS-Puffer -----------------------------------> 30 min.
       im Wasserbad (WB)                                                                                             bei 95°C

       TRS-Gebrauchspuffer kann 5 mal verwendet werden

           90 ml     Target Retrieval Solution (S 1699 / 10 fach konzentriert)
                                   +
       
 810 ml    aqua dest

        pH-Wert auf 6,1 einstellen

  6.   Behälter mit den Schnitten aus dem Wasserbad nehmen   ---------------> 20 min.
        und abkühlen lassen.                                                                                           bei RT

  7.   Spülen der Schnitte Spülen der Schnitte in mehreren Chargen aqua dest, bis kein Schäumen
         mehr beobachtet wird.

  8.   TechMate- Immunstainer einschalten und gewünschtes Programm auswählen.

  9.   Saugkissen in das Gerät legen (falls nicht schon am Tag zuvor gemacht)

10.  Füllen Sie jetzt die Reagenziengefäße mit den entsprechenden Lösungen:
        Das Reagenziengefäß hat 10 Vertiefungen ( einzufüllende Flüssigkeitsmenge
         je nach verwendeter Lösung siehe Unterpunkte a-g
).

       a. Puffer [1, 2, 3 und 4]   ( Puffer Kit K 5006): 2ml pro Vertiefung

              Reagenziengefäße entsprechend der Anzahl der zu färbenden Schnitte
              mit dem jeweiligen Puffer (1, 2, 3, oder 4) auffüllen.

        b. Protease K: 350 µl pro Vertiefung

              4 ml Proteinase K-Verdünnungsmedium (S 2032)
                                +
         

Achtung : Da Sie bei einem Programmdurchlauf fast immer gleichzeitig AK mit und ohne Proteinase Andauung haben füllen Sie bei den AK denen keine Proteinase Andauung vorgeschaltet ist einfach 350µl Puffer Nr. 2 in die jeweilige Vertiefung, damit diese Präparate zwischenzeitlich nicht austrocknen.

         c. Antikörper:
             300 µl pro Vertiefung

           Die AK werden mit dem  Antikörperverdünnungsmedium
         (grüne Lösung) (S 2022) verdünnt.

Colbar0.gif (1095 Byte)

        Detektionssystem (K 5005):

        d. Multilink [gelbe Farbe] = AB2:
            300 µl pro Vertiefung

        e. Label [rote Farbe] = AP (Alkalische Phosphatase):
            300 µl pro Vertiefung

Räumen Sie die Objektträger in das Färberack und starten Sie jetzt das Gerät

         f. Chromogen: 550 µl (nicht weniger !) pro Vertiefung

(Da das Chromogen instabil ist darf es erst ca. 10 min. bevor die Schnitte damit inkubiert werden sollen angesetzt und in den Stainer gestellt werden. Die anzusetzende Lösungsmenge richtet sich nach der Anzahl der Proben und daraus resultierend aus der Menge der benötigten Reagenziengefäße.

Siehe nachstehende Tabelle: Da alle beim Ansetzen des Chromogens benötigten Lösungen Zimmertemperatur haben müssen nimmt man diese gleich morgens aus dem Kühlschrank.

        g. Hämatoxilin:
            350µl pro Vertiefung

Nach Ablauf des Programmes nehmen Sie die Schnitte aus dem Färberack führen Sie durch eine  aufsteigende Alkoholreihe -->(70 % Alkohol --> 2 min., 96 % Alkohol --> 5 min.,
100% Alkohol --> 10 min.) ---> Xylol ---> Eindecken mit Pertex.

 

 

 

 

 

 

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18.01.2008 18:29